ОХНМЖурнал общей химии Russian Journal of General Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-460X
  • ISSN (Online) 3034-5596

Синтез новых имидазолидин-2-онов в результате реакции 1-(2,2-диметоксиэтил)мочевин с C-нуклеофилами

Код статьи
10.31857/S0044460X23060021-1
DOI
10.31857/S0044460X23060021
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 93 / Номер выпуска 6
Страницы
835-839
Аннотация
Кислотно-катализируемая реакция 1-(2,2-диметоксиэтил)мочевин с ароматическими и гетероциклическими нуклеофилами приводит к образованию новых имидазолидин-2-онов. Предложенный метод позволяет достаточно легко вводить необходимую фармакофорную группу в положение 4 имидазолидинового цикла.
Ключевые слова
ацетали имидазолидин-2-он 1-(2,2-диметоксиэтил)мочевина С-нуклеофилы С-nucleophiles
Дата публикации
17.09.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
13

Библиография

  1. 1. Vitaku E., Smith D.T., Njardarson J.T. // J. Med. Chem. 2014. Vol. 57. P. 10257. doi 10.1021/jm501100b
  2. 2. Casnati A., Motti E., Mancuso R., Gabriele B., Della Ca' N. // Catalysts. 2019. Vol. 9. P. 28. doi 10.3390/catal9010028
  3. 3. Смолобочкин А.В., Газизов А.С., Бурилов А.Р., Пудовик М.А., Синяшин О.Г. // Усп. хим. 2021. Т. 90. С. 395
  4. 4. Smolobochkin A.V., Gazizov A.S., Burilov A.R., Pudovik M.A., Sinyashin O.G. // Russ. Chem. Rev. 2021. Vol. 90. P. 395. doi 10.1070/RCR4988
  5. 5. Fu K.P., Neu H.C. // Antimicrob. Agents Chemother. 1978. Vol. 13. P. 930. doi 10.1128/AAC.13.6.930
  6. 6. Drusano G.L., Schimpff S.C., Hewitt W.L. // Clin. Infect. Diseases. 1984. Vol. 6. P. 13. doi 10.1093/clinids/6.1.13
  7. 7. Yamamoto D., Takai S., Jin D., Inagaki S., Tanaka K., Miyazaki M. // J. Mol. Cell. Cardiol. 2007. Vol. 43. P. 670. doi 10.1016/j.yjmcc.2007.08.002
  8. 8. Lewis R., Bagnall A.-M., Leitner M. // Cochrane Database of Systematic Reviews. 2005. N 3. P. 1. doi 10.1002/14651858.CD001715.pub2
  9. 9. Lee K.-C., Venkateswararao E., Sharma V.K., Jung S.-H. // Eur. J. Med. Chem. 2014. Vol. 80. P. 439. doi 10.1016/j.ejmech.2014.04.048
  10. 10. Lei H., Jiang N., Miao X., Xing L., Guo M., Liu Y., Xu H., Gong P., Zuo D., Zhai X. // Eur. J. Med. Chem. 2019. Vol. 171. P. 297. doi 10.1016/j.ejmech.2019.03.038
  11. 11. Gagné-Boulet M., Bouzriba C., Chavez Alvarez A.C., Fortin S. // J. Mol. Struct. 2022. Vol. 1259. P. 132691. doi 10.1016/j.molstruc.2022.132691
  12. 12. Robert J.-M.H., Sabourin C., Alvarez N., Robert-Piessard S., Le Baut G., Le Pape P. // Eur. J. Med. Chem. 2003. Vol. 38. P. 711. doi 10.1016/S0223-5234(03)00119-3
  13. 13. Alvarez N., Robledo S., Velez I.D., Robert J.M., Le Baut G., Le Pape P. // J. Enzyme Inhib. Med. Chem. 2002. Vol. 17. P. 443. doi 10.1080/1475636021000005749
  14. 14. Ammar A.Y., El-Sharief M.A.M.Sh., Ghorab M.M., Mohamed A.Y., Ragab A., Abbas Y.S. // Curr. Org. Synth. 2016. Vol. 13. P. 466. doi 10.2174/1570179412666150817221755
  15. 15. Gupta M., Ojha M., Yadav D., Pant S., Yadav R. // ACS Chem. Neurosci. 2020. Vol. 11. P. 2849. doi 10.1021/acschemneuro.0c00403
  16. 16. Kazmierski W.M., Furfine E., Gray-Nunez Y., Spaltenstein A., Wright L. // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2004. Vol. 14. P. 5685. doi 10.1016/j.bmcl.2004.08.038
  17. 17. Goodacre C.J., Bromidge S.M., Clapham D., King F.D., Lovell P.J., Allen M., Campbell L.P., Holland V., Riley G.J., Starr K.R., Trail B.K., Wood M.D. // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2005. Vol. 15. P. 4989. doi 10.1016/j.bmcl.2005.08.004
  18. 18. Rotstein D.M., Gabriel S.D., Manser N., Filonova L., Padilla F., Sankuratri S., Ji C., DeRosier A., Dioszegi M., Heilek G., Jekle A., Weller P., Berry P. // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2010. Vol. 20. P. 3219. doi 10.1016/j.bmcl.2010.04.077
  19. 19. Li J., Sun Y., Chen Z., Su W. // Synth. Commun. 2010. Vol. 40. P. 3669. doi 10.1080/00397910903531615
  20. 20. Kochetkov K.A., Gorunova O.N., Bystrova N.A. // Molecules. 2023. Vol. 28. P. 602. doi 10.3390/molecules28020602
  21. 21. Hopkins B.A., Wolfe J.P. // Angew. Chem. Int. Ed. 2012. Vol. 51. P. 9886. doi 10.1002/anie.201205233
  22. 22. Casnati A., Perrone A., Mazzeo P.P., Bacchi A., Mancuso R., Gabriele B., Maggi R., Maestri G., Motti E., Stirling A., Della Ca' N. // J. Org. Chem. 2019. Vol. 84. P. 3477. doi 10.1021/acs.joc.9b00064
  23. 23. Sutherell C.L., Thompson S., Scott R.T.W., Hamilton A.D. // Chem. Commun. 2012. Vol. 48. P. 9834. doi 10.1039/c2cc34791a
  24. 24. Gazizov A.S., Smolobochkin A.V., Kuznetsova E.A., Abdullaeva D.S., Burilov A.R., Pudovik M.A., Voloshina A.D., Syakaev V.V., Lyubina A.P., Amerhanova S.K., Voronina J.K. // Molecules. 2021. Vol. 26. P. 4432. doi 10.3390/molecules26154432
  25. 25. Bosebabu B., Cheruku S.P., Chamallamudi M.R., Nampoothiri M., Shenoy R.R., Nandakumar K., Parihar V.K., Kumar N. // Mini-Rev. Med. Chem. 2020. Vol. 20. P. 988. doi 10.2174/1389557520666200313120419
  26. 26. Sucipto H., Wenzel S.C., Müller R. // ChemBioChem. 2013. Vol. 14. P. 1581. doi 10.1002/cbic.201300289
  27. 27. de Macedo M.B., Kimmel R., Urankar D., Gazvoda M., Peixoto A., Cools F., Torfs E., Verschaeve L., Lima E.S., Lyčka A., Milićević D., Klásek A., Cos P., Kafka S., Košmrlj J., Cappoen D. // Eur. J. Med. Chem. 2017. Vol. 138. P. 91. doi 10.1016/j.ejmech.2017.06.061
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека