ОХНМЖурнал общей химии Russian Journal of General Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-460X
  • ISSN (Online) 3034-5596

Супрамолекулярные системы на основе альгината натрия и виологенового каликс[4]резорцина для инкапсуляции гидрофобных соединений

Код статьи
10.31857/S0044460X23050153-1
DOI
10.31857/S0044460X23050153
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 93 / Номер выпуска 5
Страницы
801-812
Аннотация
Работа посвящена исследованию супрамолекулярной системы на основе виологенового каликс[4]резорцина и альгината натрия в водной среде с привлечением набора физико-химических методов. Установлено, что альгинат натрия и виологеновый каликс[4]резорцин в диапазоне концентрационных соотношений макроцикл:полимер от 1:2 до 1:10 образуют стабильные наночастицы, способные инкапсулировать гидрофобные биологически активные вещества. Исследование цитотоксических свойств данных наночастиц в присутствии инкапсулированных субстратов показало увеличение селективности действия кверцетина и олеиновой кислоты по отношению к опухолевым клеткам M-HeLa в 2.47 и 1.14 раза соответственно.
Ключевые слова
каликсарен полимер самосборка комплексообразование солюбилизация цитотоксичность
Дата публикации
17.09.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
12

Библиография

  1. 1. Kashapov R., Gaynanova G., Gabdrakhmanov D., Kuznetsov D., Pavlov R., Petrov K., Zakharova L., Sinyashin O. // Int. J. Mol. Sci. 2020. Vol. 21. P. 6961. doi 10.3390/ijms21186961
  2. 2. Polymer-Surfactant Systems / Ed. J.C.T. Kwak. New York: CRC Press, 2020. 500 p.
  3. 3. Chavanpatil M.D., Khdair A., Panyam J. // Pharm. Res. 2007. Vol. 24. P. 803. doi 10.1007/s11095-006-9203-2
  4. 4. Khan N., Brettmann, B. // Polymers. 2019. Vol. 11. P. 51. doi 10.3390/polym11010051
  5. 5. Lee K.Y., Mooney D.J. // Prog. Polym. Sci. 2012. Vol. 37. P. 106. doi 10.1016/j.progpolymsci.2011.06.003
  6. 6. Gurikov P., Smirnova I. // Gels. 2018. Vol. 4. P. 14. doi 10.3390/gels4010014
  7. 7. Uyen N.T.T., Hamid Z.A.A., Tram N.X.T., Ahmad N. // Int. J. Biol. Macromol. 2020. Vol. 153. P. 1035. doi 10.1016/j.ijbiomac.2019.10.233
  8. 8. Massana Roquero D., Bollella P., Katz E., Melman A. // ACS Appl. Polym. Mater. 2021. Vol. 3. P. 1499. doi 10.1021/acsapm.0c01358
  9. 9. Abasalizadeh F., Moghaddam S.V., Alizadeh E., Akbari E., Kashani E., Fazljou S.M.B., Torbati M., Akbarzadeh A. // J. Biol. Eng. 2020. Vol. 14. P. 17. doi 10.1186/s13036-020-00239-0
  10. 10. Sabater I Serra R., Molina-Mateo J., Torregrosa-Cabanilles C., Andrio-Balado A., Dueñas J.M.M., Serrano-Aroca Á. // Polymers. 2020. Vol. 12. P. 702. doi 10.3390/polym12030702
  11. 11. Straccia M.C., D'Ayala G.G., Romano I., Laurienzo P. // Carbohydr. Polym. 2015. Vol. 125. P. 103. doi 10.1016/j.carbpol.2015.03.010
  12. 12. Li S., Wang X., Chen J., Guo J., Yuan M., Wan G., Yan C., Li W., Machens H.G., Rinkevich Y., Yang X., Song H., Chen Z. // Int. J. Biol. Macromol. 2022. Vol. 202.P. 657. doi 10.1016/j.ijbiomac.2022.01.080
  13. 13. Pasparakis G., Bouropoulos N. // Int. J. Pharm. 2006 Vol. 323. P. 34. doi 10.1016/j.ijpharm.2006.05.054
  14. 14. Kerschenmeyer A., Arlov Ø., Malheiro V., Steinwachs M., Rottmar M., Maniura-Weber K., Palazzolo G., Zenobi-Wong M. // Biomater. Sci. 2017. Vol. 5. P. 1756. doi 10.1039/c7bm00341b
  15. 15. Dang W., Wang Y., Chen W.C., Ju E., Mintz R.L., Teng Y., Zhu L., Wang K., Lv S., Chan H.F., Tao Y., Li M. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2023. Vol. 15. P. 4911. doi 10.1021/acsami.2c18494
  16. 16. Biopolymer Membranes and Films / Eds M.A. de Moraes, C.F. da Silva, R.S. Vieira. New York: Elsevier, 2020. P. 273.
  17. 17. Eroǧlu M., Kurşaklioǧlu H., Misirli Y., Iyisoy A., Acar A., Işin Doǧan A., Denkba E.B. // J. Microencapsul. 2006. Vol. 23. P. 367. doi 10.1080/02652040500286318
  18. 18. Lawrie G., Keen I., Drew B., Chandler-Temple A., Rintoul L., Fredericks P., Grøndahl L. // Biomacromolecules. 2007. Vol. 8. P. 2533. doi 10.1021/bm070014y
  19. 19. Yoncheva K., Tzankov B., Yordanov Y., Spassova I., Kovacheva D., Frosini M., Valoti M., Tzankova V. // J. Drug. Deliv. Sci. Technol. 2020. Vol. 59. P. 101870. doi 10.1016/j.jddst.2020.101870
  20. 20. Azumah J., Smistad G., Hiorth M. // Colloids Surf. (A). 2022. Vol. 653. P. 129924. doi 10.1016/j.colsurfa.2022.129924
  21. 21. Prabha G., Raj V. // Mater. Sci. Eng. (C). 2017. Vol. 79. P. 410. doi 10.1016/j.msec.2017.04.075
  22. 22. Maity S., Mukhopadhyay P., Kundu P.P., Chakraborti A.S. // Carbohydr. Polym. 2017. Vol. 170. P.124. doi 10.1016/j.carbpol.2017.04.066
  23. 23. Khan M.A., Yue C., Fang Z., Hu S., Cheng H., Bakry A.M., Liang L. // J. Food Eng. 2019. Vol. 258. P. 45. doi 10.1016/j.jfoodeng.2019.04.010
  24. 24. Ayaz F., Alas M.O., Genc R. // Inflammation. 2020. Vol. 43. P. 777. doi 10.1007/s10753-019-01165-0
  25. 25. Guzmán E., Llamas S., Maestro A., Fernández-Peña L., Akanno A., Miller R., Ortega F., Rubio R.G. // Adv. Colloid. Interface Sci. 2016. Vol. 233. P. 38. doi: 10.1016/j.cis.2015.11.001
  26. 26. Holmberg K., Jönsson B., Kronberg B., Lindman B. Surfactants and Polymers in Aqueous Solutions. Chichester: Wiley, 2002. 545 p.
  27. 27. Mirtič J., Paudel A., Laggner P., Hudoklin S., Kreft M.E., Kristl J. // Int. J. Pharm. 2020. Vol. 580. P. 119199. doi 10.1016/j.ijpharm.2020.119199
  28. 28. Somasundaran P., Chakraborty S., Qiang Q., Deo P., Wang J., Zhang R. // Int. J. Cosmet. Sci. 2005. Vol. 27. P. 135. doi 10.1111/j.1467-2494.2005.00257_2.x
  29. 29. Llamas S., Guzmán E., Ortega F., Baghdadli N., Cazeneuve C., Rubio R.G., Luengo G.S. // Adv. Colloid. Interface Sci. 2015. Vol. 222. P. 461.
  30. 30. Zhao L., Wang J., Zhang X., Guo X., Chen L., Zhang A., Cao K., Li J. // J. Pet. Explor. Prod. Technol. 2022. Vol. 13. P. 853. doi 10.1007/s13202-022-01564-4
  31. 31. Wu Q., Ding L., Zhang L., Ge J., Rahman M.A., Economou I.G., Guérillot D. // Energy. 2023. Vol. 264. P. 126256. doi 10.1016/j.energy.2022.126256
  32. 32. Kralova I., Sjöblom J. // J. Dispers. Sci. Technol. 2009. Vol. 30. P. 1363. doi 10.1080/01932690902735561
  33. 33. Handbook of Nutraceuticals and Natural Products: Biological, Medicinal, and Nutritional Properties and Applications / Eds P. Balakrishnan, S. Gopi. Hoboken: Wiley, 2022. P. 363.
  34. 34. Mirtič J., Ilaš J., Kristl J. // Carbohydr. Polym. 2018. Vol. 181. P. 93. doi 10.1016/j.carbpol.2017.10.040
  35. 35. Yang J., Chen S., Fang Y. // Carbohydr. Polym. 2009. Vol. 75. P. 333. doi 10.1016/j.carbpol.2008.07.037
  36. 36. Degen P., Paulus M., Zwar E., Jakobi V., Dogan S., Tolan M., Rehage H. // Surf. Interface. Anal. 2019. Vol. 51. P. 1051. doi 10.1002/sia.6691
  37. 37. Neumann M.G., Schmitt C.C., Iamazaki E.T. // Carbohydr. Res. 2003. Vol. 338. P. 1109. doi 10.1016/S0008-6215(03)00051-X
  38. 38. Hoque M.A., Mahbub S., Khan M.A., Eldesoky G.E. // J. Dispers. Sci. Technol. 2022. Vol. 43. P. 1039. doi 10.1080/01932691.2020.1847661
  39. 39. Morozova J.E., Myaldzina C.R., Voloshina A.D., Lyubina A.P., Amerhanova S.K., Syakaev V.V., Ziganshina A.Yu., Antipin I.S. // Colloids Surf. (A). 2022. Vol. 642. P. 128622. doi 10.1016/j.colsurfa.2022.128622
  40. 40. Mirtič J., Kogej K., Baumgartner S., Smistad G., Kristl J., Hiorth M. // Int. J. Pharm. 2016. Vol. 511. P. 774. doi 10.1016/j.ijpharm.2016.07.065
  41. 41. Ahmady A.R., Solouk A., Saber-Samandari S., Akbari S., Ghanbari H., Brycki B.E. // J. Colloid. Interface. Sci. 2023. Vol, 638. P. 616. doi 10.1016/j.jcis.2023.01.139
  42. 42. Zhao G., Cao K., Xu C., Sun A., Lu W., Zheng Y., Li H., Hong G.L., Wu B., Qiu Q.M., Lu Z. // Int. J. Biol. Sci. 2017. Vol. 13, P. 888. doi 10.7150/ijbs.18468
  43. 43. Liu A.-R., Lv Z., Yan Z.-W., Wu X.-Y., Yan L.-R., Sun L.-P., Yuan Y., Xu Q. // J. Transl. Med. 2023. Vol. 21. P. 27. doi 10.1186/s12967-023-03878-1
  44. 44. Yu X., Yang Y., Chen T., Wang Y., Guo T., Liu Y., Li H., Yang L. // Front. Cell. Dev. Biol. 2023. Vol. 11. P. 1075917. doi 10.3389/fcell.2023.1075917
  45. 45. Carvalho C., Moreira P.I. // Curr. Opin. Neurobiol. 2023. Vol. 79. P. 102694. doi 10.1016/j.conb.2023.102694
  46. 46. Hazra R., Novelli E.M., Hu X. // CNS Neurosci. Ther. 2023. Vol. 29. P. 783. doi 10.1111/cns.14068
  47. 47. Kashapov R., Razuvayeva Y., Ziganshina A., Sapunova A., Lyubina A., Amerhanova S., Kulik N., Voloshina A., Nizameev I., Salnikov V., Zakharova L. // J. Mol. Liq. 2022. Vol. 345. P. 117801. doi 10.1016/j.molliq.2021.117801
  48. 48. Kashapova N.E., Kashapov R.R., Ziganshina A.Y., Nikitin D.O., Semina I.I., Salnikov V.V., Khutoryanskiy V. V., Moustafine R.I., Zakharova L.Y. // Pharmaceutics. 2023. Vol. 15. P. 921. doi 10.3390/pharmaceutics15030921
  49. 49. Kashapov R., Razuvayeva Y., Ziganshina A., Lyubina A., Amerhanova S., Sapunova A., Voloshina A., Nizameev I., Salnikov V., Zakharova L. // Colloids Surf. (A). 2022. Vol. 648. P. 129330. doi 10.1016/j.colsurfa.2022.129330
  50. 50. Pescatori L., Arduini A., Pochini A., Secchi A., Massera C., Ugozzoli F. // Org. Biomol. Chem. 2009. Vol. 7. P. 3698. doi 10.1039/B906409E
  51. 51. Lv Z.-P., Chen B., Wang H.-Y., Wu Y., Zuo J.-L. // Small. 2015. Vol. 11. P. 3597. doi 10.1002/smll.201500090
  52. 52. Wang K., Guo D.-S., Wang X., Liu Y. // ACS Nano. 2011. Vol. 5. P. 2880. doi 10.1021/nn1034873
  53. 53. Chen Y.-B., Zhang Y.-B., Wang Y.-L., Kaur P., Yang B.-G., Zhu Y., Ye L., Cui Y.L. // J. Nanobiotechnol. 2022. Vol. 20. P. 272. doi 10.1186/s12951-022-01452-3
  54. 54. Qi Y., Jiang M., Cui Y.L., Zhao L., Zhou X. // Nanoscale Res. Lett. 2015. Vol. 10. P. 408. doi 10.1186/s11671-015-1117-7
  55. 55. Park E.-J., Lee A.Y., Chang S.-H., Yu K.-N., Kim J.-H., Cho M.-H. // Toxicol. Lett. 2014. Vol. 224. P. 114. doi 10.1016/j.toxlet.2013.09.018
  56. 56. Smolobochkin A.V., Gazizov A.S., Yakhshilikova L.J., Bekrenev D.D., Burilov A.R., Pudovik M.A., Lyubina A.P., Amerhanova S. K., Voloshina A.D. // Chem. Biodiversity. 2022. Vol. 19. P. e202100970. doi 10.1002/cbdv.202100970
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека